超低分子量蛋白Marker V（3.5-42
kD）（非預染）
Ultra Low Molecular Weight Protein Marker V（3.5-42 kD）
Ver.
750271-2.0
RTD6113 20次（100 μl）
● 貯存、運輸及效期：
-20℃保存；濕冰運輸；有效期1年。
● 貯存緩沖液成分：
65 mM Tris-HCl (pH 7.0), 20%
Glycerol, 還原劑, 2% SDS, 0.005% 溴酚藍。
● 產品簡介：
本產品包含8種低分子量蛋白質，分子量范圍為3.5-42 kD，通過 Tris-Tricine-SDS-PAGE電泳并經考馬斯亮藍染色后可見分子量大小為3.5，4.5，8.5，14.4，17，21，30，42
kD的條帶。
以每次上樣5 μl計算，該產品可以使用20次。
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技術規(guī)格
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條帶數量
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8條
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濃度
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0.1-0.3 μg/μl
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上樣前處理
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95-100℃加熱處理5
min
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推薦凝膠體系
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16.5%或18%Tris-Tricine-SDS-PAGE
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推薦上樣體積
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3-5 μl（1mm厚度10齒梳子）
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推薦染色方法
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非預染Marker，電泳時不可見條帶，電泳后需要考馬斯亮藍染色可以觀察條帶
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不適用于非變性電泳
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為變性Marker，不適用于非變性電泳
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● 使用說明：
1. 第一次收到該產品，常溫融化后，徹底混勻，離心快甩10
Sec將溶液完全收集到管底，-20℃貯存；
2. 使用該產品時，常溫解凍后輕輕混勻或用移液槍緩慢吹打均勻；
3. 從原液中吸取所需的上樣量至新的微量離心管中；
4. 95-100°C下加熱
5 min，使蛋白質完全變性；
5. 低速離心快甩10 Sec后，取 3-5 μl上樣電泳；
一. 制膠：
多肽電泳建議使用Tris-Tricine-SDS-PAGE系統來分離蛋白，該系統可以分離1-100 kD的蛋白質（最優(yōu)分離2.5-30 kD）?？蛻艨梢允褂肨ris-Tricine-SDS-PAGE凝膠快速制備及電泳試劑盒
（含預染Marker）（貨號：RTD6121）或Tris-Tricine-PAGE凝膠制備及電泳試劑盒（多肽變性電泳）（貨號：RTD6122）進行Tricine電泳，方便快捷?；蛘吒鶕韵鲁绦蛑苽淠z，先配制分離膠，聚合后再配制夾層膠，最后配制濃縮膠，3種膠的制膠體積比約為4.5:1.5:1.5。
1.1 配制分離膠：
1.1.1 按照表一將不同體積的分離膠組份加入到小燒杯中混合。
表一
（一塊1 mm 厚度小板膠用量）
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分離膠
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夾層膠
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濃縮膠
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16.5%T6%C/4.5
ml
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10%T3%C/2
ml
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5%T3%C/2
ml
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49.5%T
3%C
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/
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0.4
ml
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0.2
ml
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49.5%T
6%C
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1.5
ml
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/
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/
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4×凝膠緩沖液
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1.125
ml
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0.5
ml
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0.5
ml
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50%甘油（v/v）
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0.9
ml
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-
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-
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蒸餾水
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0.95
ml
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1.1
ml
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1.3
ml
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10%APS
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~45
μl
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~20
μl
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~20
μl
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TEMED
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~4.5
μl
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~2
μl
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~2
μl
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注：如非必須，不要使用1.5mm厚度的凝膠，這樣會減少電泳后染色和脫色的時間。
1.1.2 加入10%APS和TEMED，立即混勻以使溶液混勻。
1.1.3 在玻璃板中灌入分離膠溶液，然后輕輕覆蓋一層1-3 cm的無水乙醇，使凝膠表面保持平整。
1.1.4 靜置10-20分鐘，待分離膠和乙醇層之間出現一個清晰的界面表示凝膠已聚合。
注：凝膠的聚合時間與環(huán)境溫度有關。夏天溫度較高時，聚合較快；冬天氣溫低時，聚合時間會延長。分離膠37℃約10分鐘，25℃約15分鐘，18℃ 約20分鐘可以聚合。
1.2 配制夾層膠：
1.2.1 去除覆蓋在分離膠上的醇，用濾紙將殘留的醇吸去。
1.2.2 按照表一將不同體積的夾層膠組份加入到小燒杯中混合。
1.2.3 加入10%APS和TEMED，立即混勻使溶液混勻。
1.2.4 在玻璃板中灌入適量夾層膠溶液，使液面和短玻璃板上沿之間的距離比梳齒長0.5
cm即可，然后在溶液上輕輕覆蓋一層1-3cm的無水乙醇，使凝膠表面保持平整。注：此溶液為過量，請勿全部注入。
1.2.5 靜置20-30分鐘，待夾層膠和乙醇層之間出現一個清晰的界面表示凝膠已聚合。
注：凝膠的聚合時間與環(huán)境溫度有關。夏天溫度較高時，聚合較快；冬天氣溫低時，聚合時間會延長。夾層膠37℃ 20分鐘，25℃ 25分鐘，18℃ 約30分鐘可以聚合。
1.3 配制濃縮膠
1.3.1 去除覆蓋在夾層膠上的乙醇，用濾紙將殘留的醇吸去。
1.3.2 按照表一將不同體積的濃縮膠組份加入到小燒杯中混合。
1.3.3 加入10%APS和TEMED，立即混勻，以使溶液充分混勻。
1.3.4 將梳子插入凝膠內，避免產生氣泡。
1.3.5 靜置20-40分鐘裝待凝膠聚合。注：凝膠的聚合時間與環(huán)境溫度有關。夏天溫度較高時，聚合較快；冬天氣溫低時，聚合時間會延長。濃縮膠37℃ 20分鐘，25℃ 30分鐘，18℃ 40分鐘可以聚合。
二. 電泳：
2.1 電泳緩沖液配制：
電泳前，將10×陽極緩沖液（Cat No:AB080）和10×陰極緩沖液（Cat No:CB010）用蒸餾水稀釋成1×緩沖液備用。
2.2 樣品處理：
待上樣的檢測樣品與2×Tricine上樣緩沖液(Cat:TP050)等體積混合，95℃處理5分鐘后上樣。蛋白Marker一般已經含有上樣緩沖液，預染Marker不能加熱處理，混勻后直接上樣，非預染Marker一般需要95℃處理5 min后上樣。
2.3 電泳：
將電泳槽的外槽加入1×陽極緩沖液，內槽加入1×陰極緩沖液，輕柔拔出梳子，將Marker或蛋白樣品加入點樣孔，穩(wěn)壓電泳（電泳條件參考下表）
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電壓
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電流變化
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電泳時間
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濃縮膠
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恒壓30 V
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起始電流：~ 15 mA
終止電流：~ 10 mA
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~40
min
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注：等待樣品指示前沿到達夾層膠上沿時，調高電壓
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夾層膠
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恒壓80 V
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起始電流：~ 35 mA
終止電流：~ 30 mA
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~60
min
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注：等待樣品指示前沿到達分離膠上沿時，調高電壓
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分離膠
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恒壓120 V
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起始電流：~ 40 mA
終止電流：~ 20 mA
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~100
min
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待指示前沿到達分離膠下沿時,即可停止電泳，電泳時間總計約200
min。
注：恒壓條件下，電流不可調節(jié)，電流是逐漸降低的，觀察記錄電流數值。
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三. 凝膠檢測：
3.1 凝膠染色（FastBlue蛋白染色液）：
3.1.1將電泳后的PAGE膠取下放入塑料容器中,用適量蒸餾水漂洗，去除膠表面的SDS，殘余SDS會導致染色液出現沉淀。
3.1.2 棄水，加入適量染色液（以剛剛覆蓋過膠面為適)，搖床上常溫搖動，根據下表確定染色時間。
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待檢測蛋白量
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染色時間
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＞1 μg
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~5分鐘
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100 ng-1
μg
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~10分鐘
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10 ng-100
ng
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~60分鐘
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3. 1.3 搖床上搖動至所有條帶清晰可見。
3.
1.4 蒸餾水搖動漂洗脫色1-2次，每次5-10分鐘，至凝膠背景干凈。
3. 1.5 收集用過的染色液，可以重復使用2-3次。
凝膠也可以使用常規(guī)考馬斯亮藍染色液（配方7）和脫色液（配方8）進行染色和觀察。需要注意的是，常規(guī)染色和脫色方法需要較長時間，小肽由于長度較短，和凝膠結合不緊密，長時間在溶液中浸泡容易從凝膠中脫離。FastBlue蛋白染色液（貨號：RTD6202）除具有染色快，無毒，靈敏性高等特點外，還能對小肽在染色中起到固定作用，不至于小肽在染色和脫色中從凝膠中脫離，是常規(guī)染色液的理想替代品。
3.2 轉膜：
多肽電泳后轉膜選擇孔徑0.22 μm PVDF膜（用前用甲醇處理潤濕）或0.22
μm NC膜。
3.2.1
半干轉：使用伯樂Trans-Blot Turbo半干轉機器請選擇配套的5×RealBlot快速半干轉轉膜緩沖液（貨號：RT5030），推薦轉膜條件:一板小型凝膠(8×10
cm)恒流,1.3 A,10-15 min。
3.2.1
濕轉：濕轉轉膜緩沖液(25 mM Tris,192 mM Glycine, 0.01%SDS，20%
Methanol,pH~8.3），可以選擇10×Tris-甘氨酸轉膜緩沖液（貨號：TB1040）。推薦轉膜條件：恒流200
mA 40-60 min。
四.小分子蛋白質SDS-PAGE電泳試劑配制：
實驗示例：
